2.43
1,65
1,98
0,73
1,88
1,81
2.43
2.2 Substanțe standard utilizate în curba de calibrare a distribuției relative a masei moleculare: insulină, micopeptide, glicină-glicină-tirozină-arginină, glicină-glicină-glicină
3 Instrumente și echipamente
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20,8
23,9
27,5
Per total, proporția de aminoacizi din produsele Sustar este mai mare decât cea din produsele Zinpro.
Partea 8 Efectele utilizării
Efectele diferitelor surse de oligoelemente asupra performanței de producție și calității ouălor găinilor ouătoare în perioada târzie de ouat
Procesul de producție
Tehnologie de chelare țintită
Tehnologie de emulsificare prin forfecare
Tehnologie de pulverizare și uscare sub presiune
Tehnologie de refrigerare și dezumidificare
Tehnologie avansată de control al mediului
Anexa A: Metode pentru determinarea distribuției relative a masei moleculare a peptidelor
Adoptarea standardului: GB/T 22492-2008
1. Principiul testării:
Aceasta a fost determinată prin cromatografie de filtrare în gel de înaltă performanță. Adică, utilizând un material de umplutură poros ca fază staționară, pe baza diferenței dintre dimensiunile masei moleculare relative ale componentelor probei pentru separare, detectată la legătura peptidică cu lungimea de undă de absorbție ultravioletă de 220 nm, utilizând software-ul dedicat de procesare a datelor pentru determinarea distribuției relative a masei moleculare prin cromatografie de filtrare în gel (adică software-ul GPC), cromatogramele și datele aferente au fost procesate, calculate pentru a obține dimensiunea masei moleculare relative a peptidei de soia și intervalul de distribuție.
2. Reactivi
Apa experimentală trebuie să îndeplinească specificațiile pentru apa secundară din GB/T6682, iar reactivii utilizați, cu excepția unor prevederi speciale, trebuie să fie puri din punct de vedere analitic.
2.1 Reactivii includ acetonitril (cromatografic pur), acid trifluoracetic (cromatografic pur),
2.2 Substanțe standard utilizate în curba de calibrare a distribuției relative a masei moleculare: insulină, micopeptide, glicină-glicină-tirozină-arginină, glicină-glicină-glicină
3 Instrumente și echipamente
3.1 Cromatograf de lichide de înaltă performanță (HPLC): o stație de lucru cromatografică sau un integrator cu detector UV și software de procesare a datelor GPC.
3.2 Unitate de filtrare și degazare în vid cu fază mobilă.
3.3 Balanță electronică: valoare gradată 0,000 1g.
4 Pași de operare
4.1 Condiții cromatografice și experimente de adaptare a sistemului (condiții de referință)
- 4.1.1 Coloană cromatografică: TSKgelG2000swxl300 mm × 7,8 mm (diametru interior) sau alte coloane de gel de același tip cu performanțe similare, adecvate pentru determinarea proteinelor și peptidelor.
- 4.1.2 Faza mobilă: Acetonitril + apă + acid trifluoracetic = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Lungime de undă de detecție: 220 nm.
- 4.1.4 Debit: 0,5 mL/min.
- 4.1.5 Timp de detectare: 30 min.
- 4.1.6 Volumul injectării probei: 20 μL.
- 4.1.7 Temperatura coloanei: temperatura camerei.
- 4.1.8 Pentru ca sistemul cromatografic să îndeplinească cerințele de detecție, s-a stipulat ca, în condițiile cromatografice de mai sus, eficiența coloanei cromatografice pe gel, adică numărul teoretic de plăci (N), să nu fie mai mică de 10000, calculat pe baza vârfurilor standardului tripeptidic (Glicină-Glicină-Glicină).
- 4.2 Producerea curbelor standard de masă moleculară relativă
- Soluțiile standard de peptide cu mase moleculare relative diferite, menționate mai sus, cu o concentrație de masă de 1 mg/mL, au fost preparate prin potrivirea fazei mobile, amestecate într-o anumită proporție și apoi filtrate printr-o membrană cu fază organică cu dimensiunea porilor de 0,2 μm~0,5 μm și injectate în probă, apoi s-au obținut cromatogramele standardelor. Curbele de calibrare a masei moleculare relative și ecuațiile acestora au fost obținute prin reprezentarea grafică a logaritmului masei moleculare relative în funcție de timpul de retenție sau prin regresie liniară.
4.3 Tratarea probelor
Se cântăresc cu precizie 10 mg de probă într-un balon cotat de 10 ml, se adaugă puțină fază mobilă, se agită cu ultrasunete timp de 10 minute, astfel încât proba să fie complet dizolvată și se amestecă, se diluează cu faza mobilă până la atingere, apoi se filtrează printr-o membrană cu fază organică cu o dimensiune a porilor de 0,2 μm ~ 0,5 μm, iar filtratul se analizează conform condițiilor cromatografice de la A.4.1.
- 5. Calculul distribuției relative a masei moleculare
- După analizarea soluției de probă preparate în 4.3 în condițiile cromatografice de la 4.1, masa moleculară relativă a probei și intervalul său de distribuție pot fi obținute prin substituirea datelor cromatografice ale probei în curba de calibrare 4.2 cu ajutorul unui software de procesare a datelor GPC. Distribuția maselor moleculare relative ale diferitelor peptide poate fi calculată prin metoda de normalizare a ariei vârfurilor, conform formulei: X=A/A total×100
- În formula: X - Fracția de masă a unei peptide cu masă moleculară relativă în peptida totală din probă, %;
- A - Aria vârfului unei peptide cu masă moleculară relativă;
- Total A - suma ariilor de vârf ale fiecărei peptide cu masă moleculară relativă, calculată cu o zecimală.
- 6 Repetabilitate
- Diferența absolută dintre două determinări independente obținute în condiții de repetabilitate nu trebuie să depășească 15% din media aritmetică a celor două determinări.
- Anexa B: Metode pentru determinarea aminoacizilor liberi
- Adoptarea standardului: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Reactivi și materiale
- Acid acetic glacial: analitic pur
- Acid percloric: 0,0500 mol/L
- Indicator: 0,1% indicator cristal violet (acid acetic glacial)
- 2. Determinarea aminoacizilor liberi
Probele au fost uscate la 80°C timp de 1 oră.
Așezați proba într-un recipient uscat pentru a se răci natural la temperatura camerei sau până la o temperatură utilizabilă.Se cântăresc aproximativ 0,1 g de probă (cu o precizie de 0,001 g) într-un balon conic uscat de 250 ml.Treceți rapid la pasul următor pentru a evita ca proba să absoarbă umezeala ambientală.Se adaugă 25 ml de acid acetic glacial și se amestecă bine timp de maximum 5 minute.Adăugați 2 picături de indicator cristal violetSe titrează cu o soluție standard de titrare de acid percloric 0,0500 mol/L (±0,001) până când soluția își schimbă culoarea de la violet la punctul final.
Se înregistrează volumul de soluție standard consumat.
- Efectuați simultan testul martor.
- 3. Calcul și rezultate
- Conținutul de aminoacizi liberi X din reactiv este exprimat ca fracție de masă (%) și se calculează conform formulei: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, în formula:
- C - Concentrația soluției standard de acid percloric în moli pe litru (mol/L)
- V1 - Volumul utilizat pentru titrarea probelor cu soluție standard de acid percloric, în mililitri (mL).
- Vo - Volumul utilizat pentru blank-ul de titrare cu soluție standard de acid percloric, în mililitri (mL);
M - Masa probei, în grame (g).
| 0,1445: Masa medie a aminoacizilor echivalentă cu 1,00 mL de soluție standard de acid percloric [c(HClO4) = 1,000 mol/L]. | 4.2.3 Soluție standard de titrare a sulfatului de ceriu: concentrație c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/L, preparată conform GB/T601. | |
| Adoptarea standardelor: Q/70920556 71-2024 | 1. Principiul determinării (Fe ca exemplu) | Complexele de aminoacizi cu fier au o solubilitate foarte scăzută în etanol anhidru, iar ionii metalici liberi sunt solubili în etanol anhidru; diferența de solubilitate dintre cele două în etanol anhidru a fost utilizată pentru a determina rata de chelare a complexelor de aminoacizi cu fier. |
| În formula: V1 - volumul soluției standard de sulfat de ceriu consumat pentru titrarea soluției de testat, mL; | Etanol anhidru; restul este același cu clauza 4.5.2 din GB/T 27983-2011. | 3. Etapele analizei |
| Efectuați două încercări în paralel. Cântăriți 0,1 g din proba uscată la 103 ± 2 ℃ timp de 1 oră, cu o precizie de 0,0001 g, adăugați 100 ml de etanol anhidru pentru a dizolva, filtrați, filtrați reziduul spălat cu 100 ml de etanol anhidru de cel puțin trei ori, apoi transferați reziduul într-un balon conic de 250 ml, adăugați 10 ml de soluție de acid sulfuric conform clauzei 4.5.3 din GB/T27983-2011 și apoi efectuați următorii pași conform clauzei 4.5.3 „Încălziți pentru dizolvare și apoi lăsați să se răcească” din GB/T27983-2011. Efectuați testul martor în același timp. | 4. Determinarea conținutului total de fier | 4.1 Principiul determinării este același ca cel din clauza 4.4.1 din GB/T 21996-2008. |
4.2. Reactivi și soluții
| 4.2.1 Acid mixt: Adăugați 150 ml de acid sulfuric și 150 ml de acid fosforic la 700 ml de apă și amestecați bine. | 4.2.2 Soluție indicatoare de difenilamină sulfonat de sodiu: 5 g/L, preparată conform GB/T603. | 4.2.3 Soluție standard de titrare a sulfatului de ceriu: concentrație c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/L, preparată conform GB/T601. | |
| 4.3 Etapele analizei | Efectuați două încercări în paralel. Cântăriți 0,1 g de probă, cu o precizie de 0,20001 g, introduceți-o într-un balon conic de 250 ml, adăugați 10 ml de acid mixt, după dizolvare, adăugați 30 ml de apă și 4 picături de soluție indicatoare de dianilină sulfonat de sodiu, apoi efectuați următorii pași conform clauzei 4.4.2 din GB/T21996-2008. Efectuați testul martor în același timp. | 4.4 Reprezentarea rezultatelor | Conținutul total de fier X1 al complexelor de aminoacizi cu fier, exprimat în fracție masică de fier, valoarea exprimată în %, a fost calculat conform formulei (1): |
| X1=(V - V0)×C×M×10⁻³×100 | V0 - soluția standard de sulfat de ceriu consumată pentru titrarea soluției martor, mL; | V0 - soluția standard de sulfat de ceriu consumată pentru titrarea soluției martor, mL; | C - Concentrația reală a soluției standard de sulfat de ceriu, mol/L5. Calculul conținutului de fier din chelațiConținutul de fier X2 din chelat, exprimat în fracția masică de fier, valoarea exprimată în %, a fost calculat conform formulei: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| În formula: V1 - volumul soluției standard de sulfat de ceriu consumat pentru titrarea soluției de testat, mL; | V2 - soluție standard de sulfat de ceriu consumată pentru titrarea soluției blank, mL;nom1 - Masa probei, g. Se consideră media aritmetică a rezultatelor determinării în paralel ca rezultat al determinării, iar diferența absolută a rezultatelor determinării în paralel nu este mai mare de 0,3%. | 0,05585 - masa de fier feros exprimată în grame echivalentă cu 1,00 mL de soluție standard de sulfat de ceriu C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/L.nom1 - Masa probei, g. Se consideră media aritmetică a rezultatelor determinării în paralel ca rezultat al determinării, iar diferența absolută a rezultatelor determinării în paralel nu este mai mare de 0,3%. | 6. Calculul ratei de chelareRata de chelare X3, valoarea exprimată în %, X3 = X2/X1 × 100Anexa C: Metode pentru determinarea ratei de chelare a Zinpro |
Adoptarea standardului: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reactivi și materiale
a) Acid acetic glacial: analitic pur; b) Acid percloric: 0,0500 mol/L; c) Indicator: 0,1% indicator cristal violet (acid acetic glacial)
2. Determinarea aminoacizilor liberi
2.1 Probele au fost uscate la 80°C timp de 1 oră.
2.2 Așezați proba într-un recipient uscat pentru a se răci natural la temperatura camerei sau pentru a o răci până la o temperatură utilizabilă.
2.3 Se cântăresc aproximativ 0,1 g de probă (cu o precizie de 0,001 g) într-un balon conic uscat de 250 ml
2.4 Treceți rapid la pasul următor pentru a evita ca proba să absoarbă umezeala ambientală.
2.5 Adăugați 25 ml de acid acetic glacial și amestecați bine timp de maximum 5 minute.
2.6 Se adaugă 2 picături de indicator cristal violet.
2.7 Se titrează cu o soluție standard de titrare de acid percloric 0,0500 mol/L (±0,001) până când soluția își schimbă culoarea din violet în verde timp de 15 secunde, fără a-și schimba culoarea la final.
2.8 Înregistrați volumul de soluție standard consumat.
2.9 Efectuați simultan testul martor.
- 3. Calcul și rezultate
- catalan
- Physicochemical parameters
V1 - Volumul utilizat pentru titrarea probelor cu soluție standard de acid percloric, în mililitri (mL).
Vo - Volumul utilizat pentru blank-ul de titrare cu soluție standard de acid percloric, în mililitri (mL);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adresă: Drumul Qingpu nr. 147, orașul Shouan, comitatul Pujiang, orașul Chengdu, provincia Sichuan, China
Telefon: 86-18880477902
Produse
minerale anorganice în urme
- minerale organice
- Swahili
- Serviciu personalizat
- Linkuri rapide
Profilul Companiei
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | Faceți clic pentru o solicitare | © Drepturi de autor - 2010-2025: Toate drepturile rezervate. | Harta site-ului CĂUTARE DE TOP Telefon |
| Tel. | 86-18880477902 | Javaneză | E-mail |
| 8618880477902 | chinez | franceză | |
| Bird | chinez | franceză | german Spaniolă |
| Aquatic animals | japonez | coreean | arabic Greacă |
| turc | italian | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Indoneziană afrikaans suedez |
Lustrui
- Bască
- catalan
- Physicochemical parameters
hindi
Lao
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Șona
bulgar
- Cebuană
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- croat
Olandeză
| Application object | Urdu Vietnameză | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | Haitiană | Hausa | Kinyarwanda Hmong Maghiară |
| Piglets and fattening pigs | Igbo | Javaneză | Kannada Khmer Kurdă |
| Kârgâz | latin | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | macedonean Malaeziană Malayalam |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
norvegian
- Paștună
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
sârb
Sesotho
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Șona
Sindhi
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Swahili
Tadjik
Tamilă
Telugu
Thailandeză
| Application object | Urdu Vietnameză | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| idiş | Yoruba | Zulu | Kinyarwanda Oriya Turkmenă |
| Uigur | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1,52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
